近年來,各種組學(xué)研究產(chǎn)品層出不窮,助力科學(xué)研究的蓬勃發(fā)展,然而,當(dāng)您面對(duì)大量積累的高通量測(cè)序大數(shù)據(jù)的時(shí)候,是不是也會(huì)滿臉愁容?因?yàn)闆]有服務(wù)器,我們無法隨時(shí)隨地的分析自己的數(shù)據(jù)?想多次測(cè)試刪除樣本、變換分組、聯(lián)合分析?想做個(gè)性化數(shù)據(jù)分析,但公司收費(fèi)昂貴?想學(xué)生物信息學(xué)分析,但沒有免費(fèi)的課程?百邁客生物云平臺(tái)為您“量身定做”,只為科研提效。云平臺(tái)支持測(cè)序數(shù)據(jù)+公共數(shù)據(jù)雙類型分析,簡(jiǎn)單幾步即可完成任務(wù)投遞,更有豐富的個(gè)性化分析和小工具輔助數(shù)據(jù)深度挖掘,不需要自主搭建分析平臺(tái)投入的人力、財(cái)力及硬軟件設(shè)施,只需要一臺(tái)電腦,即可玩轉(zhuǎn)組學(xué)數(shù)據(jù)。
使用百邁客云平臺(tái)優(yōu)勢(shì)在于:
1. 45款研究APP,原始數(shù)據(jù)簡(jiǎn)單幾步完成任務(wù)投遞,即可得標(biāo)準(zhǔn)分析結(jié)題報(bào)告,15+個(gè)性化分析模板和上100款小工具輔助深度數(shù)據(jù)挖掘,交互的個(gè)性化分析讓數(shù)據(jù)分析更簡(jiǎn)單。
2. 8大數(shù)據(jù)庫,輕松引用。
3. 百邁客云課程,教您如何分析數(shù)據(jù),讓生信分析更簡(jiǎn)單。
4. 完善的售后服務(wù)系統(tǒng):百邁客配備了完善的售后服務(wù)系統(tǒng),包括專業(yè)售后技術(shù)團(tuán)隊(duì),智能科研助手Prof.X、在線直播交流等。涉及您的全部售后問題,項(xiàng)目分析再無后顧之憂。
下面給大家分享一篇2021年12月在線發(fā)表的轉(zhuǎn)錄組+百邁客云平臺(tái)產(chǎn)出的文章,希望給您的科研減壓。
中文題目:轉(zhuǎn)錄組和脂質(zhì)組學(xué)聯(lián)合分析揭示小麥蠟質(zhì)調(diào)控機(jī)制
英文題目:Analysis of Wheat Wax Regulation Mechanism by Liposome and Transcriptome
期刊:frontiers in Genetics
影響因子:IF 4.599
研究背景介紹
表皮蠟作為植物的第一道屏障,在抵抗生物和非生物脅迫方面發(fā)揮著重要作用,它可以限制非氣孔水分的損失,提高植物的抗旱性,幫助植物減少機(jī)械損傷、植物病蟲害,保護(hù)植物免受高溫和強(qiáng)紫外線輻射。表皮蠟是由超長(zhǎng)鏈脂肪酸(VLCFA)及其衍生物組成的復(fù)雜脂質(zhì)混合物?,F(xiàn)有研究表明,表皮蠟的生物合成始于質(zhì)體表皮細(xì)胞外膜上由超長(zhǎng)鏈脂肪酸C16或C18轉(zhuǎn)化的蠟質(zhì)前驅(qū)體,然后長(zhǎng)鏈脂肪酸通過酰基還原和脫羰基化合成不同的蠟狀化合物。在擬南芥和水稻中發(fā)現(xiàn)了許多參與蠟合成和調(diào)控的基因,如擬南芥中的轉(zhuǎn)錄因子WIN1/SHN1上調(diào)表皮蠟合成基因CER1、CER2、CER4、KCS、CYP86A7、CYP86A4、GPAT4、LACS2和HTH的表達(dá),以誘導(dǎo)表皮蠟積累,在小麥中,由于基因組信息量巨大,對(duì)小麥表皮蠟生物合成的分子調(diào)控機(jī)制研究較少。為了研究小麥表皮蠟的調(diào)控機(jī)制,本研究以甲基磺酸乙酯(EMS)誘變22號(hào)冀麥獲得的低蠟突變體和多蠟突變體為材料,通過對(duì)非靶向脂質(zhì)組學(xué)和轉(zhuǎn)錄組的相互驗(yàn)證和聯(lián)合分析,確定了小麥表皮蠟的主要成分,并挖掘出與表皮蠟代謝相關(guān)的新基因。
實(shí)驗(yàn)方法與材料
材料:EMS誘變22號(hào)高產(chǎn)品種冀麥,分離出蠟質(zhì)(waxy)和無蠟質(zhì)突變體(waxyless),種植至抽穗期取葉片組織。
測(cè)序策略:轉(zhuǎn)錄組測(cè)序用Illumina測(cè)序平臺(tái),非靶向脂質(zhì)組采用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(LC-MS)檢測(cè),每組3個(gè)生物學(xué)重復(fù)。
分析策略:百邁客云平臺(tái)真核有參轉(zhuǎn)錄組APP,測(cè)序數(shù)據(jù)一鍵式投遞,云上個(gè)性化協(xié)助分析。
主要研究結(jié)果
1. 本研究對(duì)冀麥22號(hào)低蠟突變體和多蠟突變體的葉表皮蠟進(jìn)行了非靶向脂質(zhì)體檢測(cè)和轉(zhuǎn)錄組分析。共鑒定出31個(gè)脂類亞類和1,367個(gè)脂類分子。
2. 小麥葉蠟的主要脂質(zhì)成分為WE 、DG 、TG、MG和OAHFA 。DG, MG, OAH FA首次在小麥葉片表皮蠟質(zhì)中進(jìn)行了研究。
3. 與蠟質(zhì)突變體相比,無蠟質(zhì)突變體共檢測(cè)到6840個(gè)DEGs,其中上調(diào)3181個(gè)DEGs,下調(diào)3659個(gè)DEGs。
4. 根據(jù)KEGG代謝途徑構(gòu)建小麥表皮主要蠟質(zhì)組分的代謝模式,篩選出KSC、TER、FAR、WSDCER1、MAH1、ALDH7A1、CYP704B1、ACOT1_2_4、CYP86等46個(gè)相關(guān)基因。
主要研究?jī)?nèi)容
一、葉表皮脂質(zhì)成分的鑒定與分析
通過UPLC分析,在兩個(gè)突變體的葉表皮中鑒定出31個(gè)脂質(zhì)亞類和1367個(gè)脂質(zhì)分子(圖1A)。具有大量脂質(zhì)種類的脂質(zhì)為三酰甘油(TG)、神經(jīng)酰胺(Cer)、二酰甘油(DG)、蠟酯(WE)、(O-?;?1-羥基脂肪酸(OAHFA)、單半乳糖基二酰甘油(MGDG)、磷脂酰乙醇胺(PE)、磷脂酰甘油(PG)、膽固醇(ChE)、心磷脂(CL)、磷脂酰肌醇(PI),磷脂酰絲氨酸(PS)。其中,TG、Cer、DG、WE和OAHFA占分子總數(shù)的83%(圖1B)。此外,還發(fā)現(xiàn)小麥葉表皮的主要脂質(zhì)成分為TG、Cer、DG、WE和OAHFA。

圖1.小麥葉片脂質(zhì)亞類數(shù)量統(tǒng)計(jì)圖
二、葉表皮蠟相關(guān)脂質(zhì)亞類的分析
通過比較抽穗期低蠟突變體和多蠟突變體的類脂亞類含量,篩選出類脂含量的顯著差異。在兩個(gè)突變體之間有11種脂類物質(zhì)存在顯著差異(VIP>1,p<0.05)。在低蠟突變體中,有六個(gè)高脂含量的脂質(zhì)亞類,即Cer、ZyE、PE、MGDG、CL和二半乳糖基二酰甘油(DGDG)。另一方面,在多蠟突變體中,發(fā)現(xiàn)五種脂質(zhì)類別為DG、ChE、OAHFA、WE和單酰甘油(MG)(VIP>1,p<0.05)。我們推斷,與無蠟小麥相比,蠟質(zhì)小麥具有更豐富和不同的脂質(zhì)作為小麥表皮蠟的主要成分。也就是說,抽穗期小麥葉表皮的主要脂質(zhì)成分是DG、ChE、OAHFA、WE和MG。
三、差異表達(dá)基因分析
通過對(duì)抽穗期低蠟突變體和多蠟突變體葉片轉(zhuǎn)錄組的分析,不同生物重復(fù)樣本之間的相關(guān)系數(shù)為0.890 ~ 0.926(圖2A)。與蠟質(zhì)突變體相比,無蠟突變體共檢測(cè)到6840個(gè)DEGs,其中3181個(gè)基因上調(diào),3659個(gè)基因下調(diào)(Fold Change≥2,FDR <0.01)(圖2B)。對(duì)低蠟突變體和多蠟突變體的基因進(jìn)行了GO富集分析,發(fā)現(xiàn)生物過程中主要富集在代謝過程(28.89%)、細(xì)胞過程(24.73%)、單生物過程(14.96%)、生物
節(jié)(8.35%)和刺激反應(yīng)(6.46%)。這些基因主要分布在膜、膜部分、細(xì)胞、組成細(xì)胞部分和細(xì)胞器中。
此外,我們注釋了3659個(gè)DGE的脂質(zhì)功能,篩選了343個(gè)DGE,并使用KEGG富集分析對(duì)其進(jìn)行富集(圖2C,D)。研究發(fā)現(xiàn),這些基因主要集中在甘油磷脂代謝、角質(zhì)層、亞油酸和蠟的生物合成、甘油脂代謝、鞘脂代謝、萜類主干生物合成、脂肪酸降解和脂肪酸伸長(zhǎng)途徑中,這與該研究中控制小麥葉片光澤表型的主要脂質(zhì)組分一致。
圖2 轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析
四、蠟質(zhì)和差異表達(dá)基因的聯(lián)合分析
結(jié)合脂質(zhì)組分鑒定結(jié)果,在相應(yīng)的途徑上標(biāo)記注釋基因,根據(jù)KEGG代謝途徑構(gòu)建小麥表皮主要脂質(zhì)組分的代謝模型(圖3),并篩選出46個(gè)相關(guān)基因。此外,與多蠟突變體相比,低蠟突變體中注釋到蠟酯合成(WE)的基因?yàn)?-酮酰基-CoA合酶基因(KCS),極長(zhǎng)鏈烯醇基輔酶A還原酶基因(TER)、醇形成脂肪酰輔酶A還原酶基因(FAR)、蠟酯合酶基因(WSD1)、醛脫羧酶基因(CER1)和中鏈烷烴羥化酶基因(MAH1)。TER的下調(diào)抑制長(zhǎng)鏈3氧?;o酶A向長(zhǎng)鏈?;o酶A(N2)的轉(zhuǎn)化,CER1的下調(diào)抑制上游長(zhǎng)鏈醛向長(zhǎng)鏈烷烴的轉(zhuǎn)化,KCS、FAR、WSD1和MAH1相關(guān)的表達(dá)基因均上調(diào)和下調(diào)。
在OAHFA合成過程中,?;o酶A硫代酯酶1/2/4基因(ACOT1_2_4)的上調(diào)表達(dá)促進(jìn)長(zhǎng)鏈脂肪酸的合成,而?;视椭久富颍∕GLL)的表達(dá)水平在單?;视娃D(zhuǎn)化為長(zhǎng)鏈脂肪酸的過程中上調(diào)和下調(diào)。醛脫氫酶家族7個(gè)成員A1基因(ALDH7A1)表達(dá)下調(diào)抑制了A長(zhǎng)鏈醛與長(zhǎng)鏈脂肪酸之間的過渡,醛脫氫酶基因(ALDH)則上調(diào)了A長(zhǎng)鏈醛與長(zhǎng)鏈脂肪酸之間的過渡。在長(zhǎng)鏈脂肪酸轉(zhuǎn)化為ω-羥基脂肪酸的過程中,長(zhǎng)鏈脂肪酸ω-單加氧酶基因(CYP704B1)的表達(dá)下調(diào),而突變無蠟脂肪酸ω-羥化酶基因(CYP86)的表達(dá)上調(diào)。甘油-3磷酸?;D(zhuǎn)移酶基因(GPAT)和ALDH7A1在DG、MG和TG的甘油酯代謝過程中下調(diào)。在無蠟情況下,葡萄糖的表達(dá)下調(diào)抑制了1-?;?sn甘油3-磷酸的合成,從而減少了鎂的合成。ALDH7A1在低蠟突變體中的下調(diào)表達(dá)降低了DG的合成。上調(diào)基因?yàn)锳LDH、二酰甘油二磷酸磷酸酶基因(DPP1)和二酰甘油激酶基因(dgkA),而1-酰基-SN-甘油-3-磷酸?;D(zhuǎn)移酶基因(plsC)的表達(dá)為磷脂:酰甘油?;D(zhuǎn)移酶基因(E2.3.1.158)、MGLL和酒精脫氫酶基因(AKR1AI)均上調(diào)和下調(diào)。這些基因共同作用降低低蠟突變無蠟細(xì)胞中TG的含量。