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 分類: 基因組測(cè)序

隨著分子生物學(xué)的興起和向各方面的滲透,生物科學(xué)的各分支學(xué)科也經(jīng)歷著興衰更替的變化。從目前的發(fā)展?fàn)顩r來看,在基因組研究中,利用常規(guī)研究技術(shù)及單一組學(xué)研究方法在沖擊文章的過程中,對(duì)于技術(shù)的新穎性及物種生物學(xué)問題挖掘的深入性還是有所欠缺的,因此在組學(xué)整合的前提下,可嘗試引用*新分子生物學(xué)研究技術(shù),以為沖擊高分文章“添磚加瓦”。如下小編就通過一些文章案例為大家進(jìn)一步介紹下在破譯某物種基因組密碼的基礎(chǔ)上,怎樣利用新興生物學(xué)研究技術(shù),如基因編輯,單細(xì)胞測(cè)序技術(shù)及表觀遺傳學(xué)研究等對(duì)某物種生物學(xué)性狀進(jìn)行深度挖掘。

01 基因編輯(CRISPR/Cas9

基因編輯(gene editing),又稱基因組編輯(genome editing)或基因組工程(genome engineering),是一種新興的相對(duì)√確的對(duì)某生物體基因組特定目標(biāo)基因進(jìn)行修飾的一種基因工程技術(shù)。其中CRISPR-Cas9基因編輯技術(shù),則是對(duì)靶向基因進(jìn)行特定DNA修飾的技術(shù),也是用于基因編輯中前沿的方法。以CRISPR-Cas9基礎(chǔ)的基因編輯技術(shù)在一系列基因治療的應(yīng)用領(lǐng)域都展現(xiàn)出極大的應(yīng)用前景,而在動(dòng)植物研究中也初露鋒芒。

CRISPR-Cas9基因編輯技術(shù)原理圖

 

 

文章案例1:同源多倍體紫花苜?;蚪MDe novo+基因編輯
期刊:Nature Communications發(fā)表時(shí)間:2020年5月

技術(shù)應(yīng)用:基因組De novo(PacBio CCS+ONT+ALLHiC)+?CRISPR-Cas9基因編輯

文中在對(duì)同源四倍體紫花苜蓿(Medicago sativa?L.)基因研究中,首先利用了70 GB,~22x PacBio CCS數(shù)據(jù)進(jìn)行基因組組裝,組裝獲得紫花苜?;蚪M大小3154 Mb,Contig N50=459 kb, 然后利用ALLHiC進(jìn)行同源染色體組群的劃分,最后通過Hi-C互作熱圖、遺傳圖譜共線性、ONT數(shù)據(jù)回比、BUSCO完整性、轉(zhuǎn)錄組對(duì)基因組完整性等進(jìn)行評(píng)估。同源四倍體紫花苜?;蚪M的破譯對(duì)這一重要牧草后續(xù)的分子生物學(xué)研究具有重要意義。

 

圖1 ?紫花苜?;蚪Mcircos圖

 

圖2 紫花苜蓿Hi-C互作熱圖

進(jìn)一步利用CRISPR/Cas9基因編輯系統(tǒng)對(duì)紫花苜蓿(Medicago sativa L.)中PDS基因(八氫番茄紅素合酶基因)和PALM1基因(編碼Cys(2)His(2) zinc finger transcription factor鋅指轉(zhuǎn)錄因子;在二倍體蒺藜苜蓿M. truncatula中,其對(duì)復(fù)合葉形態(tài)發(fā)生具有重要作用)進(jìn)行改造,進(jìn)一步確定不同單倍型變異對(duì)紫花苜蓿白化和矮化及葉復(fù)合形態(tài)表型性狀的影響。

圖3 CRISPR/Cas9介導(dǎo)的紫花苜?;蚓庉嬔芯?/h5>

圖4 紫花苜蓿MsPALM1的基因編輯研究

 

文章中利用了基因組三代測(cè)序技術(shù),獲得染色體級(jí)別的紫花苜?;蚪M的同時(shí),攻克了同源多倍體物種基因組組裝難題,組裝獲得了4個(gè)單倍型紫花苜蓿基因組,為后續(xù)基因編輯研究做了重要的鋪墊,進(jìn)而通過新技術(shù)CRISPR/Cas9基因編輯對(duì)控制相應(yīng)表型性狀基因進(jìn)行改造,對(duì)于紫花苜蓿后續(xù)分子生物學(xué)研究具有重要而深遠(yuǎn)的意義。

 

02單細(xì)胞測(cè)序技術(shù)(10x Genomics)

單細(xì)胞測(cè)序,簡(jiǎn)而言之,就是獲取單個(gè)細(xì)胞遺傳信息的測(cè)序技術(shù),其中10 X Genomics單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序平臺(tái)具有廣泛的應(yīng)用。該技術(shù)利用微流控、油滴包裹和barcode標(biāo)記等技術(shù)來實(shí)現(xiàn)高通量的細(xì)胞捕獲技術(shù),能夠一次性分離、并標(biāo)記500–10000個(gè)單細(xì)胞,從而獲得每個(gè)細(xì)胞的3’端的轉(zhuǎn)錄組信息。主要用于細(xì)胞分型和標(biāo)記因子的鑒定,從而實(shí)現(xiàn)對(duì)細(xì)胞群體的劃分與細(xì)胞群體間基因表達(dá)差異的檢測(cè),此外該技術(shù)還可以預(yù)測(cè)細(xì)胞分化與研究發(fā)育軌跡,在當(dāng)下疾病、免疫、腫瘤領(lǐng)域以及組織、器官、動(dòng)植物發(fā)育研究中發(fā)揮越來越重要的作用。

 

10x Genomics技術(shù)工作原理圖

 

文章案例:蚯蚓基因組De novo+10xGenomics單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序
期刊:Nature Communications發(fā)表時(shí)間:2020年6月

技術(shù)應(yīng)用:基因組De novo(PacBio +Hi-C)+10xGenomics單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序

 

文中首先利用三代利用~80×PacBio RS+~100×Hi-C輔助組裝等策略測(cè)序并拼裝了準(zhǔn)染色體水平的高質(zhì)量安德愛勝蚓基因組,組裝獲得基因組大小1.3 Gb(Scaffold N50≈111Mb),基因組完整性92.1%(BUSCO),鑒定了31,817個(gè)蛋白編碼基因,同時(shí)發(fā)現(xiàn),蚯蚓基因組中重復(fù)序列LINE2轉(zhuǎn)座元件可能在蚯蚓再生中扮演重要調(diào)控角色。

 

圖 5 蚯蚓基因組組裝

 

進(jìn)一步利用10xGenomics單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序深度解析蚯蚓再生機(jī)制,蚯蚓再生早期72小時(shí)后損傷愈合部位細(xì)胞的高比例組分是干細(xì)胞,且多能干細(xì)胞在蚯蚓再生早期過程中具有重要作用。此項(xiàng)研究提供了一些蚯蚓再生的候選分子細(xì)胞學(xué)機(jī)制。

 

圖6?蚯蚓再生過程表型組分析

 

圖7?蚯蚓再生過程單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組研究

 

文章中利用了三代測(cè)序技術(shù)及Hi-C輔助基因組組裝技術(shù),獲得染色體級(jí)別的蚯蚓基因組,基因組組裝連續(xù)性一般,但結(jié)合基因組序列信息及單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組研究解析了土壤生態(tài)系統(tǒng)重要成員無脊椎動(dòng)物蚯蚓再生的分子細(xì)胞學(xué)機(jī)制,提出蚯蚓能夠作為研究再生生物學(xué)或者再生醫(yī)學(xué)的一個(gè)新的模型。

 

03表觀遺傳學(xué)研究

表觀遺傳學(xué)主要指基于非基因序列改變所致基因表達(dá)水平變化,如DNA甲基化和染色質(zhì)構(gòu)象變化等,是研究在基因核苷酸序列不發(fā)生改變的情況下,基因表達(dá)的可遺傳的變化的一門遺傳學(xué)分支學(xué)科。其中DNA甲基化作為重要的表觀修飾研究熱點(diǎn),在動(dòng)植物基因表達(dá)調(diào)控研究一直發(fā)揮著重要的作用,隨著三代測(cè)序技術(shù)的興起,DNA甲基化的研究也更加便捷,z確。
三代Nanopore DNA甲基化檢測(cè)原理(Michael C Schatz,et al. 2018.)

 

文章案例:水稻De novo+三代DNA甲基化
期刊:Molecular Plant
發(fā)表時(shí)間:2018年11月
技術(shù)應(yīng)用:基因組De novo(PacBio)+PacBio甲基化+RNA-seq

 

 

PacBio對(duì)粳稻Nip與秈稻93-11基因組更新:利用PacBio對(duì)Nip和93-11進(jìn)行測(cè)序及Illumina平臺(tái)進(jìn)行g(shù)ap填充和誤差校正后,Nip基因組大小為380.7 Mb(contig N50=16.97 Mb),93-11基因組大小為396 Mb(contig N50=9.64 Mb);進(jìn)一步通過SMRT(單分子實(shí)時(shí)測(cè)序系統(tǒng)Single MoleculeReal Time)測(cè)序數(shù)據(jù),在Nip和93-11中分別檢測(cè)出704875個(gè)和784912個(gè)6mA位點(diǎn)。

 

圖8 水稻中6mA甲基化分析

 

文章中進(jìn)一步通過RNA-seq分析表明在Nip和93-11中,在6mA位點(diǎn)有大量的高表達(dá)基因甲基化,大量未甲基化基因在低水平表達(dá)。6mA甲基化基因的表達(dá)水平顯著高于非6mA基因;Nip對(duì)冷和鹽脅迫表現(xiàn)出更大的耐受性,而93-11對(duì)熱脅迫表現(xiàn)出更大的耐受性。6mA水平的變化在Nip和93-11之間表現(xiàn)出顯著的差異。水稻6mA含量與耐冷性呈負(fù)相關(guān),與耐鹽性和耐熱性呈正相關(guān)。

 

 

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