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 分類: 醫(yī)學(xué)研究

說起基因組印記(Genomic imprinting),小編的記憶還停留在上學(xué)幫師兄查印記基因(imprinted genes)數(shù)據(jù)庫的時候。那個時候其實根本不懂印記到底是什么,只記住了師兄在耳邊的碎碎念“父本印記則母本表達父本甲基化,母本印記則父本表達母本甲基化”。雖然后來做印記方面的工作少了,但是提起基因組印記還是倍感親切(也可能是對當(dāng)年徹夜的查數(shù)據(jù)庫的耿耿于懷)。

今年2月份發(fā)表在核酸研究上的一篇工作就采用了10X左右的Nanopore測序的數(shù)據(jù)進行基因印記的相關(guān)研究。作者采用兩種方法(Basecall method基于Fastq數(shù)據(jù),Signal method基于原始電信號)對Nanopore測序的read進行單倍型分配,并識別父母本等位差異的甲基化區(qū)域。這些等位差異的甲基化區(qū)域中有部分是已知的印記控制區(qū),同時結(jié)果與RNA-seq等位特異表達和RRBS數(shù)據(jù)結(jié)果吻合。因此作者認為那些新的等位差異甲基化區(qū)域可能是新的印記控制區(qū)。

關(guān)鍵結(jié)論

1. Nanopore測序得到的樣品的甲基化水平與RRBS結(jié)果一致性很高
2. Nanopore read比RRBS數(shù)據(jù)更容易進行單倍型分配,且85.7%的read能夠被正確分配
3. 不同單倍型間識別到的差異甲基化區(qū)域可能是候選的印記控制區(qū)
其實小編還想碎碎念一句,其實Nanopore數(shù)據(jù)不是只能做CpG,還能做5mC,6mA啦!分析完甲基化還能再分析分析結(jié)構(gòu)變異呀~ 這么一套牛哄哄的數(shù)據(jù)只用來分析CpG還是太可惜啦!

當(dāng)當(dāng)當(dāng),詳細解讀來啦~~

文章:Using long-read sequencing to detect imprinted DNA?methylation

發(fā)表日期:2019年2月

雜志:Nucleic Acids Research

影響因子:11.561

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研究背景

基因印記作為一個經(jīng)典的表觀遺傳現(xiàn)象,是指基因的表達具有親本選擇的現(xiàn)象,即只一個親本的等位基因表達,另一個親本的等位基因不表達或很少表達。印記基因在生長發(fā)育中。眾多假設(shè)認為DNA甲基化是基因組印記的主要機制,即許多的基因印記是由不同親本來源的等位基因調(diào)控區(qū)的差異甲基化造成的。

研究方法

  • RRBS:?B6 X Cast
  • RNA-seq:4個B6 X Cast正反交子代,4個Cast X B6正反交子代
  • Nanopore:B6 X Cast, Cast X B6

研究結(jié)果

  • ?Nanopore甲基化結(jié)果與其他技術(shù)結(jié)果一致

對B6 X Cast雜交的F1子代的雄性胚胎(E14.5)采用MinION平臺進行8X深度的測序,采用Nanopolish軟件識別甲基化。轉(zhuǎn)錄起始位點處甲基化水平降低,且如先前報道一致,胎盤組織的全基因組甲基化水平在50%左右。采用RRBS對相同樣品進行測序發(fā)現(xiàn)了兩個技術(shù)平臺的甲基化水平相似。

  • Nanopore測序的read單倍型有效率更高

作者定義了兩種分配單倍型的方法(Basecall method基于Fastq數(shù)據(jù),Signal method基于原始電信號)。作者將測序數(shù)據(jù)與SNP標(biāo)記的基因組進行比對,如果read上有至少5個高置信的SNP則將單倍型分配給Nanopore read,對于RRBS數(shù)據(jù),只要有一個SNP即分配單倍型。結(jié)果發(fā)現(xiàn)只有24%的RRBS測序read被分配了單倍型,而74%的Nanopore測序的read可以被分配單倍型,且父母本等位各一半。同時對于雄性樣品,比對到X染色體上絕大多數(shù)91%的read都被分配為母本單倍型。

為了進一步評估nanopore測序read分配單倍型的準(zhǔn)確性,作者又測了B6自交和Cast自交的組織。用相同的單倍型分配步驟,85.7%的read可以正確分配到相關(guān)的基因型,而只有1.5%是錯配的。

  • 親本特異和品系特異的基因表達

對B6和Cast正反交和自交的F1的胎盤組織分別進行RNA-seq測序。結(jié)果發(fā)現(xiàn)135個基因具有親本特異表達,其中88個是母本等位高表達47個是父本等位高表達。而這135個基因中,有53個是已知的印記基因,這其中又有17個(包含F(xiàn)kbp6, Smoc1/2, Gzmc/d/e/f/g, Zdhhc14 and Arid1b)在近期的研究中被認為是印記的。剩下的65個基因則組成了小鼠胎盤中候選的親本偏好表達基因。

  • Nanopore測序觀測到的已知的印記控制區(qū)

作者結(jié)合nanopore read的單倍型和甲基化數(shù)據(jù)來比較親本等位間的甲基化。發(fā)現(xiàn)Nanopore測序的數(shù)據(jù)非常容易觀測出已知的印記控制區(qū)的DMR,且與RNA-seq和RRBS的等位特異情況一致。作者發(fā)現(xiàn)Nanopore的數(shù)據(jù)涵蓋了大多數(shù)已知的印記控制區(qū)的差異甲基化,而這種甲基化差異往往會延伸到印記控制區(qū)外。

作者接下來嘗試去發(fā)現(xiàn)親本等位間的差異甲基化區(qū)域(DMR)以及品系特異的DMR。作者共得到933個DMR,其中309個可以被親本的差異所解釋,其余則是源自品系的差異。結(jié)合RRBS單倍型和RNA-seq的數(shù)據(jù)進一步證明了差異甲基化和差異表達,進而找到印記基因上感興趣的DMRs。排名靠前的前20個DMRs中有15個對應(yīng)于已知的印記控制區(qū)。雖然很多排名靠后的DMR可能是假陽性的,但是這些DMR依然包含了已知區(qū)域的印記表達。

  • 差異甲基化分析上長read的優(yōu)勢

最后,作者通過幾個例子闡述了相比于傳統(tǒng)的重亞硫酸鹽測序,基于nanopore的方法在識別親本等位DMR上的諸多優(yōu)勢。這里,小編就不贅述啦。

參考文獻

Gigante?S, Gouil Q, Lucattini A, et al.Using long-read sequencing to detect imprinted DNA?methylation.?Nucleic Acids Research.?2019.02

 

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