前言
1. 適用范圍
本指南介紹百邁客 DNA 類組織樣品的送樣要求及制備方法。采集送樣前請詳細閱讀。
2. 聲明
對于危害程度為第一、二類的高致病性樣品,只接收提取后的核酸樣品,不接收組織 樣。對于危害程度為三、四類的致病性或傳染性的組織樣,必須先通過銷售或運營與醫(yī)學 實驗平臺負責人溝通,確認無高致病和傳染性且能進行后續(xù)實驗后再安排樣品寄送。危害 程度的判定標準具體參見《人間傳染的病原微生物名錄》 。
3. 提取風險提示
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、樣本制備、樣本交接、提取方法與操作、以及環(huán)境 等因素息息相關(guān),故無法完全保證提取質(zhì)量,望老師知悉理解,并做好組織備份。為保障 獲得相對較高質(zhì)量的核酸,請老師務必按照以下指導原則準備樣本。
樣本準備前注意事項
1. 取樣的代表性
所采集的樣本應該通過嚴格的細胞學、組織學、病理學等相關(guān)鑒定,因為這關(guān)系到實 驗最終結(jié)果是否具有科學意義,所以客戶須根據(jù)實驗目的設計相關(guān)科學取樣方案和取樣步 驟。
2. 取樣的準確性
正常組織樣本中不能含有病變組織,而病理組織樣本中也不可以夾帶有正常組織。在 條件允許的前提下,爭取做到實驗組與對照組的樣本在取材時間、部位、 處理條件等方面 盡可能保持一致,否則可能會影響實驗結(jié)果的重復性和可信度。 代表性樣本的各種特征數(shù) 據(jù)必須被準確記錄,并按要求采集、制備、儲存、運輸進行實驗處理。
3. 取樣的重復性
生物學重復的取樣應盡量減少重復間樣品的差異。在條件允許的前提下,做到重復樣 本在取材時間、部位、 處理條件等方面盡可能保持一致,否則可能會影響實驗結(jié)果的重復 性和可信度。
4. 取樣的及時性
樣本質(zhì)量是影響實驗結(jié)果的最關(guān)鍵因素,因此用于研究的實驗樣本,在采集、貯存、 運輸和制備的過程中盡可能地做到迅速,最大限度的縮短從樣本采集到實驗的時間。
5. 取樣的低溫性
所取樣本離體后,經(jīng)快速清洗和標記等處理后,應立即投入液氮中速凍至少 3 h,之后 保存于-80 ℃ 冰箱或者干冰中,確保在實驗操作前樣品始終處于-80 ℃,以避免 RNA 的降 解。
組織樣送樣量要求
DNA 提取組織送樣量要求
二代
SLAF | 重測序 | 甲基化 | |
---|---|---|---|
?新鮮動物組織干重 | 0.5g | 0.5~1g | 1~2g |
新鮮植物組織干重 | 0.5~1g | 1~2g | 1~2g |
全血 | 1.5ml | 1.5ml | 2ml |
菌體(干重) | 1~2g | 1~2g | 1~2g |
三代
ONT-動植物基因組 | ONT-動植物重 測序/甲基化 | PB-動植物基因組 | |
---|---|---|---|
肝臟/腎臟等內(nèi)臟組織 | ≥3.5g | ≥0.35g | ?≥3.5g |
肌肉 | ≥5.0g | ≥0.5g | ≥5.0g |
哺乳動物血液 | ?≥5.0mL | ?≥0.5mL | ?≥5.0mL |
禽類/魚類血液 | ≥0.5mL | ≥0.1mL | ≥0.5mL |
新鮮葉片 | ≥5.0g | ≥0.5g | ≥5.0g |
花瓣/莖 | ≥10.0g | ≥1.0g | ≥10.0g |
根/種子 | ≥20.0g | ≥2.0g | ?≥20.0g |
培養(yǎng)細胞(細胞數(shù)) | ≥1×10 8 | ??≥1×10 7 | ??≥1×10 8 |
菌類
組織類型/產(chǎn)品類型 | ONT-細菌/真菌 基因組 | ?PB-細菌/真菌基 因組 |
---|---|---|
細菌 | ≥3.5×10 10 | ?≥3.5×10 10 |
單細胞真菌 | ≥3.5×10 10 | ≥3.5×10 10 |
大型真菌 | ≥10.0g | ≥10.0g |
* 注:不同類型的組織樣品,DNA 的提取得率差別較大,像人或哺乳動物的全血中紅 細胞沒有細胞核,每毫升血液中實用細胞數(shù)少,DNA 得率比較低,送樣量需相應增加;而 鳥類或魚類血液中紅細胞含有細胞核,DNA 得率會增高,送樣量可適當減少。含肌纖維細 胞豐富的肌肉組織以及含多糖多酚較高的復雜植物,DNA 得率會受到影響。真菌的細胞有 含甲殼素(又叫幾丁質(zhì))為主要成分的細胞壁,提取難度較大,建議盡量多準備一些樣品。
核酸送樣要求
1.送樣要求
1.1 術(shù)語及定義
1.1.1 檢測項目:
m:總量(Total quantity),DNA 的總質(zhì)量
c:濃度(Concentration),DNA 溶液的 Qubit 檢測濃度
N/Q:Nanodrop 檢測濃度與 Qubit 檢測濃度的比值
Size:片段大?。‵ragment size),指 DNA 分子片段主帶大小
OD260/280:Nanodrop 檢測中 OD260 和 OD280 的比值,反映 DNA 純度的指標之一
OD260/230:Nanodrop 檢測中 OD260 和 OD230 的比值,反映 DNA 純度的指標之一
1.1.2 樣品質(zhì)量檢測方法:
Nanodrop:使用 Thermo Fisher NanoDrop 2000/8000 Spectrophotometer 進行檢測的方法
Qubit:使用 Invitrogen Qubit Fluorometer 進行檢測的方法
AGE:Agarose Gel Electrophoresis 即使用瓊脂糖凝膠電泳進行檢測的方法
1.2 DNA 樣品送樣量要求
請?zhí)峁?DNA 樣品的相關(guān)檢測結(jié)果,例如以下檢測手段中的一種或多種檢測結(jié)果: Qubit、 NanoDrop、 AGE。請采取適當?shù)募兓椒?,以避免多糖、多酚、蛋白或者核酸酶?DNA 樣品的污染,并詳細注明溶解 DNA 所使用的溶解液類型。
檢測結(jié)果說明:
level A:A 類樣品,指純度、片段大小和濃度均合格,總量滿足按數(shù)據(jù)量計算總量要求的 樣品。
level B:B 類樣品,指純度、片段大小和濃度均合格,總量不完全滿足按數(shù)據(jù)量計算總量 要求的樣品。
level C:質(zhì)量不完全滿足建庫要求,可以風險建庫但不保證文庫大小與測序數(shù)據(jù)量的樣品。
level D:質(zhì)量完全不滿足建庫測序要求,不建議使用的樣品。
請您按照上述 A 類樣品的要求來準備 DNA 樣品以確保后續(xù)建庫測序能夠正常進行。如果 您準備的 DNA 樣品不能滿足 A 類樣品指標要求,并且后續(xù)不能提供更多的 DNA 樣品, 需要提前聯(lián)系銷售人員進行咨詢。
2.二代核酸送樣要求

3.三代核酸送樣要求
樣本制備保存指南
1.植物組織
由于老葉或其它組織 DNA 含量可能較低,而次生代謝物含量一般相對較高,因此, 為降低 DNA 提取難度并減少污染物干擾,請盡量選擇健康、幼嫩的葉片組織;不建議選 擇易帶有寄生或共生生物的組織,以及不易清洗和研磨的根、莖等組織致密的器官。另外 藻類組織中的水分會影響提取得率,取樣時需將組織樣中的水分吸干。新鮮組織樣采樣流 程如下:
1) 用 70%酒精將材料表面的灰塵及泥土沖洗干凈,吸干,再從植物體上取下新鮮組織?
2) 樣品分割成 50~100 mg 左右的小塊,將處理好的組織樣本混合均勻后保存于 2 mL 或更大體積的旋蓋凍存管中;并標注編號。
3) 迅速置于液氮中冷凍 3~4 h,然后按照順序依次放入樣品盒或者按照一定的規(guī)律(例 如 1-10,11-20 等)裝于自封袋中,轉(zhuǎn)移至-80 °C 長期保存(禁止亂放,尤其是項目 中樣品個數(shù)較多時);干冰運輸。
*注:
①一定不要使用自封袋常溫寄送非干燥組織樣,天氣炎熱,高溫下組織樣易腐爛變質(zhì), 易產(chǎn)生霉菌,導致提取的核酸中混有污染物種的核酸或提取失敗,影響公司成本的同時 給客戶造成不好的影響。
②干燥樣品現(xiàn)在不建議送樣,提取成功率低,如果只有干燥樣品,使用紙質(zhì)袋裝樣,在 外包裝自封袋中可以統(tǒng)一裝硅膠干燥顆粒。
2.動物組織(不含昆蟲和水產(chǎn)類)
1) 活體取下新鮮組織(肌肉、肝臟或其他組織,避免用易于寄生微生物的表皮和腸道、 可能有變異細胞的病變組織),立即剔除結(jié)締組織和脂肪組織等非研究所需的組織 類型。對腫瘤組織的取材,應盡可能準確地判定腫瘤和正常組織,腫瘤組織應將周 圍的正常組織切除干凈(正常組織也應將周圍的腫瘤組織切除干凈);
2) 迅速用預冷的 PBS 溶液(RNase free)或 0.9%生理鹽水將組織表面的殘留血液沖洗干凈
3) 如果組織體積較大,應盡量將組織切成長寬高均≤0.5 cm 的小塊(即黃豆大?。?/p>
4) 將凍處理好的組織樣本混合均勻后保存于旋蓋的存管中
5) 迅速置于液氮中冷凍 3~4 h,然后轉(zhuǎn)移至-80 °C 長期保存,送樣時干冰運輸
注:整個樣品收集過程保證樣品斷血后半小時內(nèi)完成樣品制備
3.昆蟲
1)昆蟲樣本,建議進行表面微生物的清洗,較大個體的盡量選取不帶腸道部分的組織, 對于較小個體只能用整個個體的,建議進行適當?shù)酿囸I處理(但需注意保證昆蟲的活 性)。
2)如果組織體積較大,應盡量將組織切成長寬高均≤0.5 cm 的小塊(即黃豆大?。?/p>
3)將凍處理好的組織樣本混合均勻后保存于旋蓋的存管中
4)迅速置于液氮中冷凍 3~4 h,然后轉(zhuǎn)移至-80 °C 長期保存,送樣時干冰運輸
*注:蜜蜂送樣時盡量要求老師取胸部肌肉送樣,整個蜜蜂送樣提取的核酸狀態(tài)大多數(shù)異常, 影響后續(xù)實驗。不建議送實驗室剔除,因為組織速凍過之后再剔除會化凍,提取降解的可 能性較大!
4.水產(chǎn)動物
1)取得活體組織后,用清水清洗,以去除污物,吸干表面液體;
2)如果是甲殼類(如蝦蟹等),需解剖活體組織,只取軟肉組織,將組織樣品割成約 50 mg 的小塊(約黃豆大?。?/p>
3)液氮速凍后,放入干凈的帶螺紋旋蓋保存管中;
4)轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時選擇干冰運輸寄送。
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5.細胞
一次提取反應所需細胞數(shù)≤1 X 10 7 個,以 3 X 10 6 -1 X 10 7 個為宜,可以將細胞經(jīng)裂解 液裂解后凍存運輸。
1) 從培養(yǎng)箱中取出貼壁培養(yǎng)的細胞或懸浮培養(yǎng)的細胞,顯微鏡下觀察細胞,確定生長 狀態(tài)良好(正常細胞 confluence 在 80 %左右)
2) 棄去培養(yǎng)基,用 PBS 緩沖液快速洗一次,除去 PBS 緩沖液,貼壁細胞可用細胞刮 將其刮下
3) 收集的細胞轉(zhuǎn)入 1.5 mL 的 EP 管中用液氮速凍后置于-80 °C 保存,一管裝一次提 取的量,可以將備份樣品單獨裝,禁止將一個樣品多次提取的細胞裝到一個管中, 干冰運輸
注:由于細胞量少,干冰運輸務必保證細胞處于冷凍環(huán)境,防止環(huán)境溫度增加細胞降解; 同時因樣本少易降解,務必備注信息單微量樣本液氮交接
6.全血樣本
1) 用醫(yī)用抗凝管或已裝有抗凝劑(選用檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝劑,不可用肝素)的 旋蓋管收集全血樣本
2) 上下輕輕顛倒混勻十次后,分裝到常規(guī) EP 管中,轉(zhuǎn)移至-20 或-80 °C 長期保存(實 際根據(jù)采血管的說明要求操作)
3) 干冰運輸
注:
①血液采集管請盡量不要用需專門對應提取試劑盒的采血管,以防送樣后我們因無 對應試劑盒影響提取時間(盡量送樣前溝通)
②采集完血液之后需將血液轉(zhuǎn)移至 EP 管中,玻璃材質(zhì)采血管冷凍之后易碎不規(guī)范送樣玻璃管破碎 規(guī)范送樣
7.細菌
注意:所有菌類樣品必須分離好菌體或菌絲送樣,切勿連帶培養(yǎng)基一起寄送,帶培養(yǎng) 基的菌體無法提取。
1)顯微鏡下觀察細菌生長狀態(tài),最好收集生長期處于對數(shù)期的細菌。
2)將適量體積的菌液轉(zhuǎn)移至 2 mL 旋蓋尖底離心管(無菌,無核酸酶)中,于室溫下 14000 ×g 離心 1 min。
3)棄掉培養(yǎng)基,將細菌菌體沉淀迅速置于液氮中冷凍 1-3 h 以上(凍存時間視組織量 而定,保證樣品凍存充分),然后轉(zhuǎn)移至-80 °C 長期保存。
4)將樣品管置于管架上固定好后埋在干冰箱的中間部位,大體積干冰運輸。
8.真菌
真菌的形態(tài)多樣,一般分為單細胞和多細胞真菌,酵母菌屬于單細胞真菌,而霉菌和 蕈菌(大型真菌)都屬于多細胞的真菌。
8.1 單細胞真菌
單細胞真菌以酵母菌為代表。一次提取反應所需酵母菌的量需≤1×10 7個,以 5×10 6-1× 10 7個為宜。您要做的項目要求送樣量較大時,可以將樣品按上述數(shù)量要求分裝后單獨保 存。
1)顯微鏡下觀察酵母菌生長狀態(tài),最好收集生長期處于對數(shù)期的酵母菌。
2)將適量體積的酵母菌液轉(zhuǎn)移至將 2 mL 旋蓋尖底離心管中(無菌,無核酸酶),于 室溫下 14000×g 離心 1 min。
3)棄盡培養(yǎng)基,將酵母細胞沉淀迅速置于液氮中冷凍 1-3 h 以上(凍存時間視組織 量而定,保證樣品凍存充分),然后轉(zhuǎn)移至-80 °C 長期保存。
4)將樣品管置于管架上固定好后埋在干冰箱的中間部位,大體積干冰運輸。
8.2 大型真菌
大型真菌因種屬差異,生長形態(tài)差異很大。在制備大型真菌樣品時,可參考上述 1.1 植物組織制備方法。
核酸樣本
1) 第一種方案是提取完成后的 DNA 溶液直接放入-20 °C 冰箱中進行保存;第二種方案 是采用醋酸鈉乙醇沉淀法沉淀 DNA,并且將樣品直接放入-20 °C 冰箱中進行保存; 第三種方案是向沉淀后的 DNA 固體中直接加入 1 mL75 %的無水乙醇,并且將樣品 直接放入-30 °C 冰箱中進行保存;第四種方案是提取完成后的 DNA 樣品使用低溫冷 凍儀冷凍成干粉(可常溫運輸)
注:推薦用第一種方案
2) 樣品運送前保存在-20 °C 冰箱,干冰運輸