台湾无码婬片A片AAA毛片,西西4444WWW大胆无视频,公妇乱片A片免费看少妇直播麻豆 国产乱婬片A片AAAAPp地址 http://urbisorbis.com BioMarker Mon, 03 May 2032 15:33:46 +0000 zh-CN hourly 1 https://wordpress.org/?v=4.7.22 http://urbisorbis.com/wp-content/uploads/2020/04/cropped-512-512-32x32.png 常見(jiàn)問(wèn)題 – 百邁客生物 http://urbisorbis.com 32 32 為什么全長(zhǎng)比較轉(zhuǎn)錄組不做與表達(dá)量相關(guān)的分析? http://urbisorbis.com/archives/faq/%e4%b8%ba%e4%bd%95%e5%85%a8%e9%95%bf%e6%af%94%e8%be%83%e8%bd%ac%e5%bd%95%e7%a0%94%e7%a9%b6%e7%9a%84%e7%89%a9%e7%a7%8d%e8%b7%9d%e7%a6%bb%e4%b8%8d%e8%83%bd%e8%bf%87%e8%bf%9c%e6%88%96%e8%bf%87%e8%bf%91 Fri, 12 Mar 2032 11:47:15 +0000 http://wordpress.example.com/?post_type=faq&p=11494 (1)不同物種,多拷貝基因難以確定基因的一?一對(duì)應(yīng)關(guān)系無(wú)法比較表達(dá)量;當(dāng)然,單拷貝同源基因可以確定一一對(duì)應(yīng)關(guān)系,但是;

(2)表達(dá)譜差異分析(例如?RPKM值比較)實(shí)際上使用的內(nèi)參是?RNA總量。相同物種RNA總量穩(wěn)定,所以沒(méi)有問(wèn)題。但不同物種RNA總量未必相同,所以物種間的差異分析就失去了穩(wěn)定的內(nèi)參。因此強(qiáng)行比較的話,是不嚴(yán)謹(jǐn)?shù)摹?/p> ]]> Q4.如何對(duì)lncRNA進(jìn)行靶基因預(yù)測(cè)? http://urbisorbis.com/archives/faq/q4-%e5%a6%82%e4%bd%95%e5%af%b9lncrna%e8%bf%9b%e8%a1%8c%e9%9d%b6%e5%9f%ba%e5%9b%a0%e9%a2%84%e6%b5%8b%ef%bc%9f Fri, 07 Jan 2022 10:08:36 +0000 http://urbisorbis.com/?post_type=faq&p=25454 答:基于lncRNA與其靶基因的作用方式,我們采用2種預(yù)測(cè)方法進(jìn)行l(wèi)ncRNA的順式靶基因和反式靶基因進(jìn)行預(yù)測(cè):
第一種,lncRNA調(diào)控其鄰近基因的表達(dá),主要根據(jù)lncRNA與gene的位置關(guān)系預(yù)測(cè),lncRNA 100kb范圍內(nèi)的鄰近基因?yàn)槠漤樖桨谢颍?br /> 第二種,當(dāng)樣本數(shù)目比較多時(shí),通過(guò)樣本間 lncRNA 與 mRNA 的表達(dá)量相關(guān)性分析方法來(lái)預(yù)測(cè) lncRNA的反式靶基因。

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Q3.如何進(jìn)行LncRNA的鑒定? http://urbisorbis.com/archives/faq/q3-%e5%a6%82%e4%bd%95%e8%bf%9b%e8%a1%8clncrna%e7%9a%84%e9%89%b4%e5%ae%9a%ef%bc%9f Fri, 07 Jan 2022 10:07:38 +0000 http://urbisorbis.com/?post_type=faq&p=25451 答:lncRNA的預(yù)測(cè)包含基本篩選和潛在編碼能力篩選兩部分。
(1)篩選長(zhǎng)度≥200bp,Exon個(gè)數(shù)≥2,F(xiàn)PKM≥0.1的轉(zhuǎn)錄本序列進(jìn)行后續(xù)編碼潛能預(yù)測(cè);
(2) 應(yīng)用主流的CPC分析、CNCI分析、CPAT分析、pfam蛋白結(jié)構(gòu)域分析四種方法對(duì)基本篩選獲得的轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行編碼潛能預(yù)測(cè),保留不具編碼潛能的轉(zhuǎn)錄本序列,四種方法取交集即為最后預(yù)測(cè)出的LncRNA。

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Q5. 如何進(jìn)行動(dòng)植物的miRNA鑒定 http://urbisorbis.com/archives/faq/q5-%e5%a6%82%e4%bd%95%e8%bf%9b%e8%a1%8c%e5%8a%a8%e6%a4%8d%e7%89%a9%e7%9a%84mirna%e9%89%b4%e5%ae%9a Fri, 31 Dec 2021 10:21:52 +0000 http://urbisorbis.com/?post_type=faq&p=25292 答:
在已知miRNA鑒定方面,我們將比對(duì)到參考基因組的reads與miRBase(v22)數(shù)據(jù)庫(kù)中的已知miRNA的成熟序列及其上游2nt與下游5nt的范圍進(jìn)行比對(duì),最多允許一個(gè)錯(cuò)配,這樣鑒定到的reads被認(rèn)為是鑒定到的已知miRNA。
miRNA轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)多位于基因間隔區(qū)、內(nèi)含子以及編碼序列的反向互補(bǔ)序列上,其前體具有標(biāo)志性的發(fā)夾結(jié)構(gòu),成熟體的形成是由Dicer/DCL酶的剪切實(shí)現(xiàn)的。針對(duì)miRNA的生物特征,對(duì)于未鑒定到已知miRNA的序列,百邁客利用miRDeep2軟件進(jìn)行新miRNA的預(yù)測(cè)。
我們利用miRDeep2軟件包,通過(guò)reads比對(duì)到基因組上的位置信息得到可能的前體序列,基于reads在前體序列上的分布信息(基于miRNA產(chǎn)生特點(diǎn),mature,star,loop)及前體結(jié)構(gòu)能量信息(RNAfold randfold)采用貝葉斯模型經(jīng)打分最終實(shí)現(xiàn)新miRNA的預(yù)測(cè)。miRDeep2主要用于動(dòng)物miRNA的預(yù)測(cè),通過(guò)參數(shù)的調(diào)整及打分系統(tǒng)的改變也可以對(duì)植物的miRNA進(jìn)行預(yù)測(cè)。

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Q4. miRNA命名規(guī)則是怎樣的? http://urbisorbis.com/archives/faq/q4-mirna%e5%91%bd%e5%90%8d%e8%a7%84%e5%88%99%e6%98%af%e6%80%8e%e6%a0%b7%e7%9a%84%ef%bc%9f Fri, 31 Dec 2021 10:21:03 +0000 http://urbisorbis.com/?post_type=faq&p=25290 答:
參照miRBase的命名規(guī)則:{物種名縮寫(xiě)}-miR-{編號(hào)};miR-前綴后面所跟著的數(shù)字,代表命名的順序,比如,miR-124比miR-456發(fā)現(xiàn)得早。“miR-”代表成熟的miRNA、“mir-”代表pre-miRNA和pri-miRNA、“MIR”代表編碼miRNA的基因。
miRNA幾乎全是獨(dú)一的編碼順序,但對(duì)于擁有一兩個(gè)堿基不同的則會(huì)被標(biāo)上字母以示,例如,miR-124a與miR-124b。 若成熟的miRNA相同,但pre-miRNA和pri-miRNA和編碼他們的基因來(lái)自于不同的基因組,則使用數(shù)字來(lái)表示,例如,mir-194-1和mir-194-2表示兩個(gè)pre-, pri-miRNA剪切后的成熟miRNA是完全相同的,但卻是兩個(gè)不同的來(lái)源。
前綴的三個(gè)字母代表了不同的種族來(lái)源,例如,hsa-miR-194代表miRNA來(lái)源于人類(lèi),oar-miR-124來(lái)源于綿羊。
對(duì)于形成pre-,pri-miRNA莖環(huán)的兩端miRNA, 通常一端在數(shù)量上遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過(guò)另一端。數(shù)量?jī)?yōu)勢(shì)的一端往往稱(chēng)為guide strand,而另一端被稱(chēng)為passenger strand,通常被大量降解,用*號(hào)來(lái)表示,例如miR-124和miR-124*。
最新版中miRBase已經(jīng)不再使用*來(lái)標(biāo)記microRNA與其發(fā)夾前體互補(bǔ)配對(duì)位置的互補(bǔ)序列,而是使用“-3p”與“-5p”作為區(qū)分這兩條序列的后綴替代舊的的命名法。(參考http://www.mirbase.org/help/nomenclature.shtml)
舉例: aly-miR158b-3p, aly 代表這是Arabidopsis lyrata 物種的miRNA, -miR158b表示這是成熟的miRNA , 其中b表示還有一個(gè)miRNA序列與它相似,僅有一兩個(gè)堿基不同。 -3p 表示它從前體的3’端剪切得到。
對(duì)新預(yù)測(cè)的miRNA 我們統(tǒng)一用 novel_miR_{數(shù)字編號(hào)} 來(lái)命名, 如 novel_miR_4974。

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Q2.為什么宏基因組與微生物多樣性物種注釋結(jié)果存在差異? http://urbisorbis.com/archives/faq/q2-%e4%b8%ba%e4%bb%80%e4%b9%88%e5%ae%8f%e5%9f%ba%e5%9b%a0%e7%bb%84%e4%b8%8e%e5%be%ae%e7%94%9f%e7%89%a9%e5%a4%9a%e6%a0%b7%e6%80%a7%e7%89%a9%e7%a7%8d%e6%b3%a8%e9%87%8a%e7%bb%93%e6%9e%9c%e5%ad%98 Thu, 04 May 2017 02:34:48 +0000 http://wordpress.example.com/?post_type=faq&p=11410 微生物多樣性和宏基因組都會(huì)分析環(huán)境中物種的種類(lèi),但是物種的豐度在二者之間存在一定的差異,第一種原因是微生物多樣性是基于核糖體小亞基基因序列進(jìn)行物種注釋和豐度統(tǒng)計(jì),但是在不同物種中核糖體基因的拷貝數(shù)不一樣,這會(huì)帶來(lái)一些誤差;第二種原因是二者在建庫(kù)測(cè)序過(guò)程中會(huì)進(jìn)行PCR反應(yīng),在PCR這個(gè)過(guò)程中也會(huì)存在一些誤差。

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3、真菌基因組材料選擇有哪些注意事項(xiàng)? http://urbisorbis.com/archives/faq/%e7%9c%9f%e8%8f%8c%e5%9f%ba%e5%9b%a0%e7%bb%84%e6%9d%90%e6%96%99%e9%80%89%e6%8b%a9%e6%9c%89%e5%93%aa%e4%ba%9b%e6%b3%a8%e6%84%8f%e4%ba%8b%e9%a1%b9%ef%bc%9f Wed, 03 May 2017 09:52:26 +0000 http://wordpress.example.com/?post_type=faq&p=11364 答:對(duì)于真菌基因組測(cè)序,首先注意保證不要有雜菌的污染,需要通過(guò)核染色確定真菌基因組是單核還是多核,可通過(guò)細(xì)菌基因組調(diào)研圖來(lái)確定雜合度以及重復(fù)序列,再評(píng)估最佳的精細(xì)圖測(cè)序策略。

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2、真菌基因組準(zhǔn)完成圖是什么意思? http://urbisorbis.com/archives/faq/%e7%9c%9f%e8%8f%8c%e5%9f%ba%e5%9b%a0%e7%bb%84%e5%87%86%e5%ae%8c%e6%88%90%e5%9b%be%e6%80%8e%e4%b9%88%e7%90%86%e8%a7%a3%ef%bc%9f Wed, 03 May 2017 09:47:56 +0000 http://wordpress.example.com/?post_type=faq&p=11362 答:真菌基因組準(zhǔn)完成圖是通過(guò)二代測(cè)序+三代測(cè)序+光學(xué)圖譜結(jié)合進(jìn)行組裝分析,將真菌基因組組裝到近染色體的水平,組裝到近染色體不是說(shuō)通過(guò)光學(xué)把組裝的scaffold掛到染色體上,意思是組裝出來(lái)的scaffold數(shù)量接近染色體的數(shù)量,是組裝完整性的一種指標(biāo)。

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1、真菌基因組二代+三代具體是怎么組裝的? http://urbisorbis.com/archives/faq/1%e3%80%81%e7%9c%9f%e8%8f%8c%e5%9f%ba%e5%9b%a0%e7%bb%84%e4%ba%8c%e4%bb%a3%e4%b8%89%e4%bb%a3%e5%85%b7%e4%bd%93%e6%98%af%e6%80%8e%e4%b9%88%e7%bb%84%e8%a3%85%e7%9a%84%ef%bc%9f Wed, 03 May 2017 09:43:47 +0000 http://wordpress.example.com/?post_type=faq&p=11359 答:具體的組裝方法有三種,選擇組裝結(jié)果。

方法一:二代數(shù)據(jù)和三代數(shù)據(jù)測(cè)序片段混合組裝;

方法二:二代數(shù)據(jù)和三代數(shù)據(jù)分別組裝,然后再用分別組裝后的結(jié)果在congtig水平再連接組裝;

方法三:二代數(shù)據(jù)組裝,再用三代數(shù)據(jù)對(duì)二代組裝的contig進(jìn)行連接到scaffold水平。

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3、細(xì)菌基因組測(cè)序中比較基因組分析是什么? http://urbisorbis.com/archives/faq/3%e3%80%81%e7%bb%86%e8%8f%8c%e5%9f%ba%e5%9b%a0%e7%bb%84%e6%b5%8b%e5%ba%8f%e4%b8%ad%e6%af%94%e8%be%83%e5%9f%ba%e5%9b%a0%e7%bb%84%e5%88%86%e6%9e%90%e6%98%af%e4%bb%80%e4%b9%88%ef%bc%9f Wed, 03 May 2017 09:25:48 +0000 http://wordpress.example.com/?post_type=faq&p=11356 答:細(xì)菌基因組比較基因組分析,主要是分析有親緣關(guān)系的細(xì)菌基因之間的差別,通過(guò)比較基因組分析親緣遠(yuǎn)近關(guān)系,特有和共有基因以及共線性分析等,找到差異基因,對(duì)差異基因進(jìn)行功能注釋?zhuān)馕鼋夑P(guān)系細(xì)菌間生理或形態(tài)差別的原因。

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